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PC-12(低分化)大鼠肾上腺嗜铬细胞瘤细胞
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PC-12(低分化)大鼠肾上腺嗜铬细胞瘤细胞源自大鼠肾上腺髓质嗜铬细胞瘤,是一种低分化、神经元特性的细胞模型。该细胞在神经生长因子(NGF)诱导下可分化出神经元样表型,广泛用于研究神经分化、递质分泌、神经毒性及退行性疾病机制,是神经科学领域的经典工具。

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更新时间:2025-12-08

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PC-12(低分化)大鼠肾上腺嗜铬细胞瘤细胞

PC-12(低分化)大鼠肾上腺嗜铬细胞瘤细胞是神经内分泌研究的经典模型,1976年从N-亚硝基甲脲诱导的大鼠肾上腺髓质嗜铬细胞瘤中分离建立,隶属于神经外胚层源性肿瘤细胞系。该细胞系因低分化状态下保留嗜铬细胞核心特征,且可被诱导分化为神经元样细胞,成为解析神经递质合成、神经分化机制及神经退行性疾病的核心工具,在神经生物学与药理学领域应用广泛。

生物学特性上,低分化PC-12细胞呈现典型嗜铬细胞瘤形态,体外以贴壁生长为主,细胞呈圆形或多边形,排列紧密时呈巢状分布,核质比高,核仁明显,胞质内可见嗜铬颗?!馐嵌璺影防嗌窬葜实拇⒋娼峁埂F浜诵奶卣魇羌婢咧琢鲈鲋郴钚杂肷窬诜置诠δ埽禾逋獗对鍪奔湓?8小时,可合成并分泌去甲shen上腺素、多巴胺等儿茶酚胺类物质,分泌过程受乙酰dan碱、尼古丁等神经递质调控。低分化状态下高表达嗜铬细胞标志物酪an酸羟化酶(TH)、嗜铬粒蛋白A(CgA),神经特异性标志物表达较低,且对神经生长因子(NGF)等分化信号敏感。

体外培养低分化PC-12细胞的核心是维持其低分化表型与神经内分泌功能,zui环境为37℃、5% CO?的恒温恒湿培养箱,推荐使用添加10%胎牛血清(FBS)、5%马血清(HS)及1%抗菌药物的RPMI 1640培养基,双血清组合可稳定细胞增殖状态。培养时需密切监测细胞密度,当融合度达70%-80%时及时传代,避免过度融合诱导自发分化。传代前用0.25%消化酶-EDTA溶液消化2-3分钟,待细胞边缘收缩后终止消化,轻柔吹打成单细胞悬液,传代比例1:3-1:5为宜。特别注意:避免长期使用高浓度NGF,防止细胞向高分化神经元样细胞转化;长期培养需通过高效液相色谱(HPLC)检测儿茶酚胺分泌量,确保功能稳定。

研究应用中,低分化PC-12细胞的价值具有鲜明针对性。神经递质研究领域,可用于解析酪an酸羟化酶(TH)、多巴胺β-羟化酶在儿茶酚胺合成中的调控机制,探究神经递质转运体(如NET)的功能及药物调控作用;神经分化机制研究方面,以NGF诱导其向神经元样细胞分化为模型,解析MAPK/ERK、PI3K/Akt信号通路在神经突起形成、突触发生中的作用;神经退行性疾病研究中,可构建帕金森病模型(MPP?诱导)、阿尔茨海默病模型(Aβ处理),模拟多巴胺能神经元损伤过程,筛选神经?;ひ┪?;药物研发领域,是神经毒性评价与神经?;ひ┪锷秆〉暮诵钠教?,通过检测细胞活性、儿茶酚胺分泌及凋亡率,评估化合物的神经活性。

需注意的是,低分化PC-12细胞为肿瘤源性,其代谢与信号通路与正常嗜铬细胞存在差异,实验结论需结合原代细胞验证;培养条件波动易导致分化状态改变,需严格控制血清浓度与生长因子水平。但凭借稳定的神经内分泌表型、易诱导分化特性及与神经细胞的高度关联性,低分化PC-12细胞已成为神经生物学研究的标gan模型,为神经机制解析、疾病模型构建及药物研发提供关键支撑。

 

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