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HSKMC人骨骼肌细胞
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HSKMC人骨骼肌细胞源自人骨骼肌组织,贴壁生长可分化为肌管,具肌肉收缩功能,可用于肌病机制、运动生理及肌肉损伤修复相关研究与药物筛选。

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更新时间:2025-11-11

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HSKMC人骨骼肌细胞

一、细胞基本生物学特性

HSKMC人骨骼肌细胞源自人正常骨骼肌组织的成肌细胞(卫星细胞),经体外分离纯化与培养建立细胞株,是研究人类骨骼肌生理功能、肌分化机制及肌肉相关疾病的核心体外模型。其保留了骨骼肌细胞的关键生物学特征,尤其在模拟肌纤维形成、肌肉收缩功能及损伤修复响应方面表现突出,在运动生理学、肌肉病理学及再生医学研究领域应用广泛。

形态上,该细胞在增殖阶段(成肌细胞状态)呈长梭形或纺锤形,胞体细长(长 20-30μm,宽 5-8μm),胞质均匀呈淡嗜酸性,细胞核椭圆形位于细胞中央;随培养条件诱导可进入分化阶段,细胞逐渐停止增殖并相互融合,形成多核长管状结构(肌管,直径 10-20μm,长度可达数百微米),肌管内可见平行排列的肌丝(通过特殊染色可观察到肌节结构),模拟体内骨骼肌纤维的形态特征。体外培养以贴壁生长为主,增殖阶段细胞排列疏松,分化阶段细胞逐渐聚集并融合为肌管,无恶性增殖特性,常规培养条件下可维持 3-4 周活性(分化后的肌管可维持 1-2 周收缩功能)。功能特性方面,该细胞具备骨骼肌细胞的核心功能 —— 分化形成的肌管可表达肌收缩相关蛋白(如肌动蛋白、肌球蛋白),在电刺激或化学信号诱导下可产生节律性收缩;能分泌肌生长因子(如肌抑素、IGF-1)调控自身增殖与分化;可响应机械应力、营养信号等外界刺激,模拟体内骨骼肌的生长、修复与适应过程(如运动诱导的肌纤维肥大)。

分子表型上,该细胞在增殖阶段高表达成肌细胞特异性标志物,如肌分化因子 MyoD、肌细胞生成素 Myogenin、成肌细胞表面抗原 CD56;分化为肌管后则高表达成熟骨骼肌标志物,如肌动蛋白 α-actin、肌球蛋白重链 MHC、肌钙蛋白 T,其中 MyoD?MHC?表型与正常骨骼肌细胞分化特征高度一致;同时表达肌肉功能相关蛋白,包括肌收缩调控蛋白(如肌钙蛋白 I、肌球蛋白轻链)、信号通路蛋白(如 IGF-1 受体、AKT)及肌肉修复相关蛋白(如卫星细胞标志物 Pax7);细胞内存在骨骼肌分化与功能调控的关键信号通路,如 IGF-1 介导的 PI3K/AKT/mTOR 通路(促进肌纤维肥大与蛋白质合成)、MyoD 家族介导的肌分化通路(调控成肌细胞向肌管转化)、机械应力激活的 MAPK 通路(参与肌肉损伤修复),这些通路正常激活是维持骨骼肌生理功能的基??;染色体核型为正常人类二倍体(46 条染色体),与人体骨骼肌细胞的分子特征wan全吻合,为肌肉相关研究提供可靠实验模型。

二、体外培养关键条件

HSKMC 人骨骼肌细胞的体外培养需精准调控环境与营养,兼顾其增殖需求与分化潜能:培养基选择上,增殖阶段常用 DMEM 高糖培养基,需添加 10% 胎牛血清(FBS,促进成肌细胞增殖)、1% 非必需氨基酸(NEAA),培养基 pH 值严格控制在 7.2-7.4,渗透压维持在 280-300 mOsm/kg;若需诱导细胞分化为肌管,需更换为分化培养基(DMEM 高糖培养基 + 2% 马血清,血清浓度降低可抑制增殖、启动分化),诱导时间通常为 5-7 天(具体时长依细胞融合度调整);开展肌肉收缩功能实验或药物干预实验时,需确保培养基中葡萄糖浓度充足(高糖环境支持肌管能量代谢),避免营养不足影响收缩活性。

培养环境需稳定在 37℃恒温、5% CO?浓度及饱和湿度的培养箱中,CO?浓度波动≤±0.3%,温度偏差超过 ±1℃会导致细胞增殖速率下降,分化过程紊乱(如肌管形成减少、收缩功能减弱);因细胞贴壁依赖性强,需使用未经包被的普通培养器皿(成肌细胞可分泌细胞外基质辅助贴附),但需确保培养皿表面洁净,避免划痕影响细胞铺展与融合。传代管理是培养核心:增殖阶段细胞融合度达 70%-80% 时需及时传代,操作前用无菌 PBS 清洗细胞 2 次,加入 0.25% 细胞消化液,37℃孵育 2-3 分钟至细胞间隙增大、形态变圆,立即加入含 FBS 的培养基终止消化,轻柔吹打形成单细胞悬液(避免用力过猛导致细胞破碎),按 1:3 比例接种至新培养皿;需注意分化后的肌管无法传代,若需长期培养需维持成肌细胞状态,避免过早启动分化。此外,细胞对血清质量极敏感,增殖阶段需选用低内毒素(≤5 EU/mL)、批次间一致性高的胎牛血清,分化阶段马血清需选择无溶血、无菌的产品,劣质血清会导致成肌细胞增殖率下降 50% 以上,肌管形成率显著降低。

三、核心科研应用领域

依托与正常人类骨骼肌细胞的高度相似性及分化可控性,HSKMC 人骨骼肌细胞在科研领域价值显著:

  1. 骨骼肌分化与肌纤维形成机制研究:可用于解析人类骨骼肌从成肌细胞向成熟肌纤维的分化进程与调控机制,如探索马血清、IGF-1 对肌管形成的诱导作用,研究 MyoD、Myogenin 等转录因子对肌特异性基因(如 MHC)表达的调控,观察分化过程中细胞形态(从梭形到肌管)、标志物表达及肌丝组装的动态变化,为理解肌肉发育障碍疾病(如先天性肌营养不良、成肌不全症)的机制提供实验依据。

  1. 肌肉相关疾病机制研究:可构建多种肌肉疾病的细胞模型,如通过添加高糖 / 高脂培养基(模拟糖尿病性肌?。?、H?O?(模拟氧化应激相关肌损伤)、肌营养不良相关基因突变(如敲除 dystrophin 基因模拟杜氏肌营养不良),观察细胞增殖活性、肌管形成率、收缩功能及疾病相关标志物(如肌酶 CK 释放、炎症因子 IL-6 表达)的变化;分析 PI3K/AKT、MAPK 等通路在疾病状态下的异常激活,为杜氏肌营养不良、糖尿病性肌wei缩、运动神经元病相关肌损伤等疾病的发病机制研究提供基础。

  1. 肌肉损伤修复与再生机制研究:可用于研究骨骼肌损伤后的修复与再生机制,如探索机械拉伸刺激(模拟运动修复)、生长因子(如 IGF-1、FGF)对成肌细胞增殖与迁移的促进作用,分析卫星细胞标志物 Pax7 的表达变化(反映干细胞激活状态),观察损伤肌管周围成肌细胞的融合修复过程;通过 Western Blot 检测肌修复相关蛋白(如 desmin、vimentin)的表达,明确修复过程的分子通路,为开发肌肉损伤修复策略(如再生医学疗法)提供靶点。

  1. 肌肉相关药物筛选与评估:可用于筛选治疗肌肉疾病或改善肌肉功能的药物,如筛选促进肌管形成的药物(用于肌营养不良)、增强肌肉收缩功能的药物(用于老年肌少症)、抑制肌肉炎症与氧化损伤的药物(用于运动损伤);通过 MTT 法检测药物对成肌细胞增殖率的影响,通过免疫荧光检测肌管形成率(MHC 阳性肌管比例),通过视频记录分析药物对肌管收缩频率与幅度的影响,评估药物疗效;同时可检测药物对骨骼肌细胞的毒性(如是否导致细胞凋亡、肌管溶解),为肌肉疾病治疗药物的安全性评价提供数据支持。

 

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